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  • 双向电泳(two-dimensional electrophoresis)完整操作步骤2017-10-15 07:42:14

    (一)第一向等电聚焦 1. 从冰箱中取-20℃冷冻保存的水化上样缓冲液(I)(不含DTT,不含Bio-Lyte)一小管(1ml/管),置室温溶解。 2. 在小管中加入0.01g DTT, Bio-Lyte 4-6、5-7各2.5ml,充分混匀。 3. 从小管中取出400ml水化上样缓冲液,加入100ml样品,...

  • PCR扩增产物的电泳分析-22017-10-15 07:41:31

    2)染色剂:核酸电泳后,需经染色后才能显现出带型,最常用的是溴化乙锭染色法,其次是银染色。 溴化乙锭(ethidium bromide,EB)是一种荧光染料,EB分子可嵌入核酸双链的碱基对之间,在紫外线激发下,发出红色荧光。根据情况可在凝胶电泳液中加入终浓度为 0.5...

  • PCR扩增产物的电泳分析-12017-10-15 07:40:48

    凝胶电泳分琼脂糖电泳和聚丙烯酰胺凝胶电泳两种。 一、琼脂糖凝胶电泳 琼脂糖凝胶电泳是一种非常简便、快速、最常用的分离纯化和鉴定核酸的方法。琼脂糖是从海藻中提取的一种线状高聚物。根据琼脂糖的溶解温度,把琼脂糖分为一般琼脂糖和低熔点琼脂糖。低熔点...

  • DNA电泳(agarose胶)操作方法2017-10-15 07:40:06

    一、 试剂与材料: 1、 琼脂糖 2、 电泳缓冲液(1TAE) 3、 10mg/ml溴化乙锭 4、 上样缓冲液 5、 电泳仪和水平电泳漕 6、 透射紫外灯 7、 胶带纸 二、 操作方法 按1~2%的琼脂糖浓度(据DNA样品分子量不同而定)配胶100ml 置于微波炉内加热搅拌,至琼脂糖完全...

  • 核酸电泳(RNA电泳与DNA电泳)2017-10-15 07:39:23

    (一)DNA的凝胶电泳:凝胶电泳是分子克隆的中心技术之一。 1.琼脂糖凝胶用于分离大于200~1000bp的片段;操作简单、快速,且分离范围广,分辨率高。 2.聚丙烯酰胺凝胶用于分离5-500bp的片段; 效果好、分辨率极高,相差1bp的DNA片断就能分开,能容纳相对大量...

  • 影响电泳的因素:电场和溶液2017-10-15 07:38:40

    不同的带电颗粒在同一电场中泳动的速度不同。常用泳动度(或迁移率)来表示。泳动度是指带电颗粒在单位电场强度下泳的速度。 影响泳动度的主要因素有: 1、首先决定于带颗粒的性质,即颗粒所带净电荷的数量,大小及形状 一般说来,颗粒带净电荷多,直径小而接...

  • 电泳技术基本知识和种类2017-10-15 07:38:00

    电泳是指带粒子在电场中向与自身带相反电荷的电极移动的现象。例如蛋白质具有两性电离性质。当蛋白质溶液的pH在蛋白质等电点的碱侧时,该蛋白质带负电荷,在电场中向正极移动,相反则带正电荷,在电场中向负极移动,只有蛋白质溶液pH在蛋白质的等电点时静电荷...

  • 凝胶迁移(Gel Shift)实验操作方法-22017-10-15 07:37:14

    探针冷竞争反应: Nuclease-Free Water 4微升 EMSA/Gel-Shift结合缓冲液(5X) 2微升 细胞核蛋白或纯化的转录因子 2微升 未标记的探针 1微升 标记好的探针 1微升 总体积 10微升 突变探针的冷竞争反应: Nuclease-Free Water 4微升 EMSA/Gel-Shift结合缓冲液(...

  • 凝胶迁移(Gel Shift)实验操作方法-12017-10-15 07:36:31

    1.探针的标记: (1) 如下设置探针标记的反应体系: 待标记探针 (1.75pmol/微升) 2微升 T4 Polynucleotide Kinase Buffer (10X) 1微升 Nuclease-Free Water 5微升 [-32P]ATP(3,000Ci/mmol at 10mCi/ml) 1微升 T4 Polynucleotide Kinase (5-10U/微升)...

  • 凝胶迁移实验(gel shift)基本知识问题与回答-32017-10-15 07:35:47

    TFIIB与预启动复合物结合后,致使RNA聚合酶II和TFIIF结合到转录启始区。故TFIIB在预启动复合物的形成中有重要作用。当用纯化的 TFIID作凝胶迁移实验时,poly dI-dC不用加入结合反应中。结合缓冲液含10%甘油,20mM Tris(pH8.0), 10mM MgCl2, 2mM DTT, 89mM...

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