作者:中华医学网
发布时间:2017-10-15 07:41浏览:
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丙烯酰胺(%) | 有效分离范围(bp) | 溴酚兰* | 二甲苯青* |
3.5 | 100~2000 | 100 | 460 |
5.0 | 80~500 | 65 | 260 |
8.0 | 60~400 | 45 | 160 |
12.0 | 40~200 | 30 | 70 |
15.0 | 25~150 | 15 | 60 |
20.0 | 10~100 | 12 | 45 |
*表中给出的数字为与指示剂迁移率相等的双链DNA分子所含碱基对数目(bp)。
1、材料
1)电泳仪器:电泳仪,垂直电泳槽及其附件。
2)30%丙烯酰胺 丙烯酰胺,29克 N,N'一亚甲基双丙烯酰胺,1克 H2O,加至100ml 装于棕色瓶内,4℃可保存二个月。
3)10%过硫酸铵 过硫酰铵,1克 加水至,10ml 4℃可保存一周,-20℃可保存一个月。
4)1XTBE电泳缓冲液
5)TEMED(四甲基乙烯基二胺)
2、聚丙烯酰胺凝胶的制备与电泳
根据分离DNA片段的大小及需凝胶的容积,配制聚丙烯酰胺凝胶。
1)按要求装配好垂直电泳板,两块玻璃板的两侧及底部用1%的琼脂糖封边,防止封闭不严而使聚丙烯酰胺液漏出。
2)将装好的玻璃电泳板倾斜成45~60℃角。
3)按表3配制所需%浓度凝胶的毫升数。
4)加入TEMED后,立即混匀,缓缓倒入两玻璃板间的胶床中,直到液体接近溢出时为止。
5)立即插入适当的梳子,密切注意防止梳齿下产生气泡,用一有力的夹将梳子夹在一边的玻璃板上,然后将玻璃板斜靠在物体上,使成10°角,可减少液体泄漏的机会。
6)室温聚合一小时后,将玻璃板插入电泳槽中,上紧,倒入0.1XTBE 缓冲液。
7)小心取出梳子,立即用缓冲液冲洗加样孔,因为梳子取出后,梳子上吸附的及凝胶顶部未聚合的丙烯酰胺会流入加样孔内聚合,产生不规则的表面,将导致以后DNA电泳带型不规则。
8)将DNA样品与适量的载样缓冲液混匀后,加到样品孔内,加样时不要产生气泡。
9)接好电极,电压为1-8V/cm,进行电泳。
10)根据指示剂迁移位置来判定是否终止电泳。
11)电泳毕,切断电源,弃去电泳仪,取出胶床板,小心移去一块玻 璃板,让凝胶吸附在另一块玻璃板上。浸入含0.5ug/ml的溴化乙锭溶 液中,15~30min后取出水洗紫外仪下观察结果。
12)聚丙烯酰胺凝胶电泳只能检出>10ng以上量的DNA条带。要求更高的灵敏度,可用银染。