问：看到很多讨论说 96孔四周不做数据处理，那么还是要加细胞或培养基吗？如果我把四周设为空白孔（不加细胞）作为阴性对照，可以用来调零或计算抑制率不？
答：可用只加培养基组作为正常对照组，来计算细胞生存率=给药组MTT/正常组MTT×100%，余空可不加任何物质。 MTT不同与做 ELISA需要设立空白对照、阴性对照和阳性对照，这其中的空白对照一般用PBS，目的是去除板底效应。
实际上，对于96孔板的细胞培养可以采取一个方法来改变出现误差的情况，就是将你的分组打乱，不要让你同一组的细胞集中排在一个区域，尽量打乱，就可以了
首先，分析原因，即必须知道在96孔板四周做数据处理会有什么影响。
因为96孔板的密封性比较良好，也就是说培养箱内空气中的O2是透过板四周很小的空隙进入培养板的，细胞代谢产生的CO2也是通过四周空隙从板内排出来的。在板内外气体交换时，37度条件下，板内的水汽也被大量带出板外。这样，就会造成96孔四周孔内的体积减少，如果细心一点，就会发现外外周孔内培养基的体积明显小于内部的体积。因此，如果最外一周有细胞进行培养，则会因培养基成分的浓度偏高而对细胞有影响，同时也会因为体积变化在做加入药物干预实验时，药物浓度偏高而对测定结果有影响。
因此，在具体操作时，可以采用以下对策：
知道原因，我们可以跟据实验情况选择PBS或D－Hanks溶液，因为外周加入这种成本低廉的溶液，一方面可以减少内部各孔中细胞培养液中水份的损失，另一方面，可以做为分析染菌等突发事故的原因，进行排查，找到染菌源头。当然，因为作MTT时，你本身会做空白对照与阳性对照，所以你可以完全不用管本底带来的误差了（建议你采用中间列6个孔为空白对照组，剩下共有9组54个孔，正好可以做三个药，每个药可设高、中、低三个浓度；加细胞时，你采用随机加细胞法，反正60孔细胞你加满就可以放心去培养了！）。
2．细胞培养板与ELISA
问：请教各位，做ELISA能否用培养板呢，有什么差别呢？
答：应该用ELISA试验专用板子。细胞培养板是不行的。ELISA专用板条，是经过处理的，要求每孔的均一性要好；而细胞培养板同样经过处理，但是是为了细胞更好地贴壁生长，使用细胞培养板可能会造成孔与孔之间的显色没有可比性。
所以，细胞培养板可以做要求不严格的定性ELISA实验，而其他情况，应当使用正规ELISA板条。
问：大家的ELisa板有没有重复利用啊，我们这里重复利用，但是没有洗板机，就人工洗一下，然后煮沸，再烘干，不知这样是否合理啊，我感觉还是新板的效果好些，还请高手指教！
答：细胞培养板用于定性或要求不是很高还可以，对于定量试剂最好用酶标板，可以提高均一性减少差异，而且强吸附酶标板还可以减少包被抗原或抗体的用量，因此最好用酶标板。
ELisa板一般不能重复利用。一是对板子均匀性的要求高，重复使用难达到。二是不划算，一块板子的试剂便宜的要几百元，贵的要几千元，而一块空板贵的也就几十元，便宜的还不到10元，再将样本的价格和耗费的时间加上，而得到不靠的结果，你说应该如何办？
洗板机不是清洗重复使用板子的，而是在加样过程中为了提高自动化程度洗板子用的（洗涤是ELISA实验步骤之一）。
3．细胞培养板与免疫组化
问：在塑料的细胞培养板上，进行免疫组化应当怎样合适，有没有这样的技巧？
答：完全没有什么特别的，只是在最后封片的时候，有些不同。还有需要注意的是每一步加液体时应从培养孔的壁上轻轻加上。使液体慢慢到达孔底，我第一次作时，没注意到这一点，到最后细胞所剩无几，所以虽是细节问题，但很重要 。